Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения

¦          ¦       ¦двери                           ¦                          ¦
¦          ¦       ¦                                ¦                          ¦
¦Свыше 80, ¦15     ¦т. 1 - 3 - в центре             ¦                          ¦
¦однока-   ¦       ¦стерилизационной камеры на трех ¦                          ¦
¦мерные    ¦       ¦уровнях сверху вниз,            ¦                          ¦
¦          ¦       ¦т. 4 - 15 - по углам на трех    ¦                          ¦
¦          ¦       ¦уровнях (т. 4 - 7 - низ,        ¦                          ¦
¦          ¦       ¦т. 8 - 11 - середина,           ¦                          ¦
¦          ¦       ¦т. 12 - 15 - верх), размещая    ¦                          ¦
¦          ¦       ¦против часовой стрелки          ¦                          ¦
¦          ¦       ¦                                ¦                          ¦
¦Свыше 80, ¦30 (по ¦Аналогичным образом (как в      ¦См. схему для однокамерных¦
¦двухка-   ¦15 в   ¦однокамерных стерилизаторах) для¦стерилизаторов с объемом  ¦
¦мерные    ¦каждой ¦каждой стерилизационной камеры  ¦стерилизационной камеры   ¦
¦          ¦камере)¦                                ¦свыше 80 куб. дм          ¦
-----------+-------+--------------------------------+---------------------------

Примечание. Контрольные тесты помещают на расстоянии не менее 5 см от стенок стерилизационной камеры.

Таблица П.5.4

Код формы по ОКУД

Код учреждения по ОКПО

--------------------------------+-----T-----------------------------------------
¦Министерство здравоохранения РФ¦     ¦Медицинская документация. Форма N 257/у ¦
+-------------------------------+     ¦       Утверждена Минздравом СССР       ¦
¦    Наименование учреждения    ¦     ¦             04.10.80 N 1030            ¦
--------------------------------+-----+-----------------------------------------

                                    Журнал
            работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава)

Начат "__" ____________ 199_ г.                Окончен "__" ____________ 199_ г.

-----+-------+-------------+----T----------+-----------+------------------+-----
¦Дата¦Марка, ¦Стерилизуемые¦Упа-¦Время сте-¦   Режим   ¦  Тест-контроль   ¦Под-¦
¦    ¦N сте- ¦   изделия   ¦ков-¦рилизации,¦           ¦                  ¦пись¦
¦    ¦рилиза-¦             ¦ка  ¦мин.      ¦           ¦                  ¦    ¦
¦    ¦тора   +------+------+    +-----+----+-----+-----+------+-----T-----+    ¦
¦    ¦       ¦наиме-¦коли- ¦    ¦нача-¦ко- ¦дав- ¦тем- ¦биоло-¦тер- ¦хи-  ¦    ¦
¦    ¦       ¦нова- ¦чество¦    ¦ло   ¦нец ¦ление¦пера-¦гиче- ¦миче-¦миче-¦    ¦
¦    ¦       ¦ние   ¦      ¦    ¦     ¦    ¦     ¦тура ¦ский  ¦ский ¦ский ¦    ¦
+----+-------+------+------+----+-----+----+-----+-----+------+-----+-----+----+
-----+-------+------+------+----+-----+----+-----+-----+------+-----+-----+-----

Приложение 6

КОНТРОЛЬ СТЕРИЛЬНОСТИ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ

1. Требования к помещению для посева на стерильность.

1.1. Контроль стерильности изделий, простерилизованных в ЛПУ, проводят в специально оборудованных помещениях, соблюдая асептические условия, исключающие возможность вторичной контаминации изделий микроорганизмами.

Посев исследуемого материала желательно проводить в настольных боксах с ламинарным потоком воздуха.

При их отсутствии контроль стерильности проводят в боксированных помещениях (бокс с предбоксником). Общая площадь бокса должна быть не менее 3 кв. м.

1.2. В боксированном помещении стены должны быть окрашены масляной краской или выложены кафельной плиткой, не должны иметь выступов, карнизов, щелей, трещин; пол в боксе и рабочий стол должны быть покрыты линолеумом или другим гладким, легко моющимся и устойчивым к действию дезинфицирующих средств материалом; стенки и ножки стола должны быть окрашены масляной краской.

1.3. Боксы оборудуют приточно-вытяжной вентиляцией (с преобладанием притока над вытяжкой) с подачей в них воздуха через бактериальные фильтры.

1.4. В боксе и предбокснике устанавливают бактерицидные облучатели в соответствии с нормами, предусмотренными действующими инструктивно-методическими документами (Руководство Р.3.1.683-98 "Использование ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях").

2. Подготовка бокса, инструментов и персонала к работе.

2.1. Перед проведением работы поверхности в помещениях бокса и предбоксника (стены, пол, оборудование и др.), а также внутренние поверхности настольного бокса протирают 3% раствором перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства. В случае обнаружения в воздухе грибов или спорообразующих микроорганизмов обработку проводят 6% раствором перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства или 6% раствором средства "Пероксимед", или 2% раствором средства "ПВК" (концентрации приведены по ДВ).

Через 45 - 60 мин. после обработки в бокс вносят все необходимые для работы материалы и инструменты, кроме образцов изделий.

2.2. При проведении работы в настольном боксе в нем включают вентиляцию на время, достаточное для обеспечения полного обмена воздуха, а затем помещают необходимый для работы материал.

2.3. В боксе и предбокснике перед работой включают бактерицидные облучатели. Длительность облучения определяют в соответствии с документом, упомянутым в п. 1.4.

2.4. Вспомогательные инструменты и лабораторную посуду, используемые в работе, а также спецодежду предварительно стерилизуют. В процессе работы вспомогательные инструменты 2 - 3 раза заменяют аналогичным стерильным комплектом.

Внутреннюю поверхность настольного бокса обрабатывают так же, как и помещение бокса. Через 45 - 60 мин. после обработки в бокс вносят все необходимые для работы материалы и инструменты, кроме образцов изделий.

2.5. Перед входом в бокс работники лаборатории тщательно моют руки теплой водой с мылом, вытирают их стерильным полотенцем (салфеткой), надевают в предбокснике бахилы, стерильные халаты, 4-слойные маски, шапочки и стерильные перчатки.

2.6. В процессе работы в боксе проверяют обсемененность воздуха. Для этого на рабочий стол ставят 2 чашки с питательным агаром, открывая их на 15 мин., затем чашки помещают в термостат при температуре 32 °C на 48 часов.

Допускается рост не более трех колоний неспорообразующих сапрофитов на чашке.

В случае роста более трех колоний дополнительно проводят обработку бокса 6% раствором перекиси водорода с 0,5% раствором моющего средства или 6% раствором средства "Пероксимед", или 2% раствором средства "ПВК".

3. Правила отбора проб.

3.1. В стационарах, имеющих централизованные стерилизационные, контролю на стерильность подлежит не менее 1% от числа одновременно простерилизованных изделий одного наименования.

3.2. В стационарах, не имеющих централизованных стерилизационных и осуществляющих стерилизацию в отделениях, контролю на стерильность подлежат не менее двух одновременно простерилизованных изделий одного наименования.

3.3. Отбор проб на стерильность проводит лаборант центра Госсанэпиднадзора, дезинфекционной станции или медицинская сестра под руководством сотрудника бактериологической лаборатории.

3.4. При стерилизации изделий в упакованном виде (централизованная и децентрализованная стерилизация) все изделия, подлежащие контролю, направляют в бактериологическую лабораторию в упаковке, в которой осуществляли их стерилизацию. Перед доставкой в лабораторию стерильные изделия в упаковке дополнительно заворачивают в стерильную простыню или помещают в наволочку.

При стерилизации изделий в неупакованном виде в отделении отбор проб проводят в стерильные емкости, соблюдая правила асептики.

После проведения контроля стерильности все изделия, за исключением перевязочных материалов, подлежат обязательному возврату для последующего использования.

4. Методика и техника посева на стерильность.

4.1. Посевы на стерильность проводит бактериолог с помощью лаборанта.

4.2. Перед посевом исследуемый материал вносят в предбоксник, предварительно сняв наружную мягкую упаковку. В предбокснике с помощью стерильного пинцета (корнцанга) стерилизационные коробки, пакеты протирают снаружи стерильной салфеткой (ватным тампоном), смоченной 6% раствором перекиси водорода, перекладывают на стерильный лоток и оставляют на 30 мин., затем переносят в бокс. При поступлении изделий, упакованных в два слоя бумаги, пергамента, ткани, первый слой снимают в предбокснике и изделия во внутренней упаковке переносят в бокс.

4.3. В боксе с помощью стерильного пинцета изделия извлекают из стерилизационной коробки, пакета или другой упаковки.

4.4. Контроль стерильности проводят путем прямого посева (погружения) изделий целиком (при их небольших размерах) или в виде отдельных деталей (разъемные изделия) и фрагментов (отрезанные стерильными ножницами кусочки шовного, перевязочного материала и т.п.) в питательные среды. Объем питательной среды в пробирке (колбе, флаконе) должен быть достаточным для полного погружения изделия (деталей или фрагментов изделия).

При проверке стерильности более крупных изделий проводят отбор проб методом смывов с различных участков поверхности изделий: с помощью стерильного пинцета (корнцанга) каждый участок тщательно протирают марлевой салфеткой (размер салфетки 5 х 5 см), увлажненной стерильной питьевой водой или стерильным 0,9% раствором хлорида натрия, или раствором нейтрализатора (при стерилизации раствором химического средства). Каждую салфетку помещают в отдельную пробирку с питательной средой.

У изделий, имеющих функциональные каналы, рабочий конец опускают в пробирку с питательной средой и с помощью стерильного шприца или пипетки 1 - 2 раза промывают канал этой средой.

4.5. При контроле стерильности проводят посев на тиогликолевую среду (сухая питательная среда для контроля стерильности НИИВС им. И.И. Мечникова) и среду Сабуро. Состав сред и способ их приготовления приведены в приложении N 1 к Приказу Минздрава СССР от 31 июля 1978 г. N 720 "Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией" (тиогликолевую среду из сухой питательной среды готовят способом, указанным на этикетке).

При контроле изделий каждого наименования обязателен одновременный посев на обе указанные питательные среды.

На пробирках, колбах и флаконах с посевами делают надписи с указанием даты посева, номеров загрузки и образца.

4.6. Посевы в тиогликолевую среду выдерживают в термостате при температуре 32 °C, посевы в среду Сабуро - при температуре 20 - 22 °C в течение 14 суток при контроле изделий, простерилизованных растворами химических средств и газовым методом, в течение 7 суток - изделий, простерилизованных термическими (паровой, воздушный) методами.

4.7. При отсутствии роста микроорганизмов во всех пробирках (колбах, флаконах) делают заключение о стерильности изделий.

Комментарии
Комментирование через социальные сервисы Facebook и Вконтакте: